Comptes Rendus
Small-volume nucleation
[Vers le confinement spatial de la nucléation]
Comptes Rendus. Physique, Volume 14 (2013) no. 2-3, pp. 192-198.

Il apparait clairement que lʼétape de nucléation est décisive dans le contrôle des propriétés des matériaux. On sʼintéresse à son contrôle en suivant deux objectifs : le premier, très fondamental, concerne la détection du germe critique, la théorie de la nucléation et la compréhension des mécanismes ; le second, plus applicatif, concerne la maitrise de la cristallisation des matériaux et de leurs propriétés (pour lʼindustrie pharmaceutique, la biocristallographie ou la biominéralisation…). Cʼest dans ce cadre que nous avons mené des expérimentations vers le confinement, la localisation spatiale et temporelle de la nucléation, démontrant les possibilités dʼun unique événement de cristallisation.

Dans ce contexte, nous avons développé une approche en deux temps, basée sur la génération de gouttes de petit volume, du nanolitre au femtolitre, en utilisant deux montages différents, mais complémentaires. Un premier outil microfluidique simple et polyvalent a été mis en place pour étudier la nucléation, en réduisant le volume de nucléation au nanolitre. Sans pour autant traiter le problème du confinement, il permet dʼaccéder à la cinétique de nucléation. Lʼinfluence directe du volume de manipulation sur la cristallisation est traitée, dans un second temps, à travers un deuxième outil expérimental que nous avons aussi développé ; utilisant un micro-injecteur couplé à des nano-déplaceurs, il permet dʼatteindre des volumes du picolitre au femtolitre et montre la possibilité dʼagir sur la nucléation par le confinement.

The nucleation mechanisms behind crystallized products remain mysterious. In this communication, we describe experiments performed using small volumes, microdroplets, to control nucleation and thus product properties. The effect of small-volume systems on nucleation is discussed.

Publié le :
DOI : 10.1016/j.crhy.2012.12.004
Keywords: Nucleation, Germination, Growth from solutions, Droplets, Microfluidic
Mot clés : Nucléation, Germination, Croissance en solution, Gouttes, Microfluidique

Zoubida Hammadi 1 ; Nadine Candoni 1 ; Romain Grossier 1 ; Manuel Ildefonso 1 ; Roger Morin 1 ; Stéphane Veesler 1

1 CINaM-CNRS, Aix-Marseille Université, Campus de Luminy, 13288 Marseille, France
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Zoubida Hammadi; Nadine Candoni; Romain Grossier; Manuel Ildefonso; Roger Morin; Stéphane Veesler. Small-volume nucleation. Comptes Rendus. Physique, Volume 14 (2013) no. 2-3, pp. 192-198. doi : 10.1016/j.crhy.2012.12.004. https://comptes-rendus.academie-sciences.fr/physique/articles/10.1016/j.crhy.2012.12.004/

[1] A.A. Chernov Crystal growth science between the centuries, J. Mater. Sci., Mater. Electron., Volume 12 (2001), pp. 437-449

[2] R. Grossier; S. Veesler Reaching one single and stable critical cluster through finite sized systems, Cryst. Growth Des., Volume 9 (2009), pp. 1917-1922

[3] R. Grossier; Z. Hammadi; R. Morin; A. Magnaldo; S. Veesler Generating nanoliter to femtoliter microdroplets with ease, Appl. Phys. Lett., Volume 98 (2011), p. 091916

[4] E.W. Muller; T.T. Tsong Field Ion Microscopy: Principles and Applications, American Elsevier Publishing Company, New York, 1969

[5] Z. Hammadi; M. Gauch; R. Morin Microelectron gun integrating a point-source cathode, J. Vac. Sci. Technol. B, Volume 17 (1999), pp. 1390-1394

[6] Z. Hammadi; J.P. Astier; R. Morin; S. Veesler Protein crystallization induced by a localized voltage, Cryst. Growth Des., Volume 8 (2007), pp. 1476-1482

[7] T. Detoisien; M. Forite; P. Taulelle; J. Teston; D. Colson; J.P. Klein; S. Veesler A rapid method for screening crystallization conditions and phases of an active pharmaceutical ingredient, Org. Process Res. Dev., Volume 13 (2009), pp. 1338-1342

[8] S. Lafont; S. Veesler; J.P. Astier; R. Boistelle Solubility and prenucleation of aprotinin BPTI molecules in sodium chloride solution, J. Cryst. Growth, Volume 143 (1994), pp. 249-255

[9] R.C. Stevens High-throughput protein crystallization, Curr. Opin. Struct. Biol., Volume 10 (2000), pp. 558-563

[10] S.L. Anna; N. Bontoux; H.A. Stone Formation of dispersions using “flow focusing” in microchannels, Appl. Phys. Lett., Volume 82 (2003), pp. 364-366

[11] P. Laval; J.-B. Salmon; M. Joanicot A microfluidic device for investigating crystal nucleation kinetics, J. Cryst. Growth, Volume 303 (2007), pp. 622-628

[12] L. Li; D. Mustafi; Q. Fu; V. Tereshko; D.L. Chen; J.D. Tice; R.F. Ismagilov Nanoliter microfluidic hybrid method for simultaneous screening and optimization validated with crystallization of membrane proteins, Proc. Natl. Acad. Sci., Volume 103 (2006), pp. 19243-19248

[13] J.-U. Shim; G. Cristobal; D.R. Link; T. Thorsen; S. Fraden Using microfluidics to decouple nucleation and growth of protein, Cryst. Growth Des., Volume 7 (2007), pp. 2192-2194

[14] T.M. Squires; S.R. Quake Microfluidics: Fluid physics at the nanoliter scale, Rev. Mod. Phys., Volume 77 (2005), p. 977

[15] J. Leng; J.B. Salmon Microfluidic crystallization, Lab Chip, Volume 9 (2009), pp. 24-34

[16] R.D. Dombrowski; J.D. Litster; N.J. Wagner; Y. He Crystallization of alpha-lactose monohydrate in a drop-based microfluidic crystallizer, Chem. Eng. Sci., Volume 62 (2007), pp. 4802-4810

[17] J.-B. Salmon; J. Leng Microfluidics for kinetic inspection of phase diagrams, C. R., Chim., Volume 12 (2009), pp. 258-269

[18] M. Ildefonso; N. Candoni; S. Veesler; A. Cheap Easy microfluidic crystallization device ensuring universal solvent compatibility, Org. Process Res. Dev., Volume 16 (2012), pp. 556-560

[19] M. Ildefonso; N. Candoni; S. Veesler Using microfluidics for fast, accurate measurement of lysozyme nucleation kinetics, Cryst. Growth Des., Volume 11 (2011), pp. 1527-1530

[20] E. Revalor; Z. Hammadi; J.P. Astier; R. Grossier; E. Garcia; C. Hoff; K. Furuta; T. Okutsu; R. Morin; S. Veesler Usual and unusual crystallization from solution, J. Cryst. Growth, Volume 312 (2010), pp. 939-946

[21] M. Ildefonso; E. Revalor; P. Punniam; J.B. Salmon; N. Candoni; S. Veesler Nucleation and polymorphism explored via an easy-to-use microfluidic tool, J. Cryst. Growth, Volume 342 (2012), pp. 9-12

[22] J.-M. Ha; J.H. Wolf; M.A. Hillmyer; M.D. Ward Polymorph selectivity under nanoscopic confinement, J. Am. Chem. Soc., Volume 126 (2004), pp. 3382-3383

[23] M. Beiner; G.T. Rengarajan; S. Pankaj; D. Enke; M. Steinhart Manipulating the crystalline state of pharmaceuticals by nanoconfinement, Nano Lett., Volume 7 (2007), pp. 1381-1385

[24] K. Kim; I.S. Lee; A. Centrone; T.A. Hatton; A.S. Myerson Formation of nanosized organic molecular crystals on engineered surfaces, J. Am. Chem. Soc., Volume 131 (2009), pp. 18212-18213

[25] C.J. Stephens; S.F. Ladden; F.C. Meldrum; H.K. Christenson Amorphous calcium carbonate is stabilized in confinement, Adv. Funct. Mater., Volume 20 (2010), pp. 2108-2115

[26] R. Grossier; A. Magnaldo; S. Veesler Ultra-fast crystallization due to confinement, J. Cryst. Growth, Volume 312 (2010), pp. 487-489

[27] P. Laval; C. Giroux; J. Leng; J.-B. Salmon Microfluidic screening of potassium nitrate polymorphism, J. Cryst. Growth, Volume 310 (2008), pp. 3121-3124

[28] D. Vivares; E.W. Kalera; A.M. Lenhoff Quantitative imaging by confocal scanning fluorescence microscopy of protein crystallization via liquid–liquid phase separation, Acta Crystallogr. D, Volume 61 (2005), pp. 819-825

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